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中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-035 Z* B2 r: H2 j1 T* {
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) " W, } q. H: x* c* L2 o4 y+ q
Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1. Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
* O& R& t c4 r0 y 近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 2 ]0 b/ C, D/ M/ `* y+ j
1 材料与方法 5 E! ^- N3 s3 M- g
1.1 土壤样品 某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基 本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下: 1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。 2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L. 含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养 称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离 制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验 在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 + E6 N. u* z" P% ~8 `# L, \
表1 ZL1菌株正交试验方案及试验结果
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' x; b/ o* F. H3 y
7 w( B2 o0 Y* A: Y表2 ZL2菌株正交试验方案及试验结果
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' x1 q/ f6 |! ^, w' g/ b! o因素# p" y, f4 P1 K3 v: R5 i6 v
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)1 a( I9 V" d4 R- }# v
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)! E4 h+ \. j& o _7 o+ I
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( H( W; w+ q& C: g2
& Y3 N% n, h5 S8 C) |8 A# w25! {4 P, U; {2 F9 I9 n, `2 c
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' s% {( n' R9 c4 C+ @+ ?: K- l: ~: t " H/ l9 d8 W' \5 T* B
; m) U7 d3 D* i. K3 D1 ]1.5 降解能力试验 配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法 用紫外介光光度法测定。 4 d) W9 v0 W6 x" a3 \0 F
2 结果分析
( \1 _1 ?( k( K2.1 优势菌筛分试验 富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 2 N$ P0 D3 o% v" [
表3 4株机油降解菌形态特征
* }9 M! Y9 M8 t$ J; w2 R
8 I% Y, q1 s& v# s5 Q
" V) Y/ E9 ^& [! F* w" r
) E4 t4 N, g# r4 k
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菌落颜色
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淡黄; p- u( r7 c8 {( o
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粉红% p: |% n0 E, ?% G
! X1 ]# {3 u, s- U9 d9 r3 P. B
菌落形态; o) s1 I9 _4 s; B% z
不透明,微隆起,全缘,$ b7 y6 O) w- [- D
半透明,圆形
2 U4 }3 N: Y$ u1 d; z# d半透明,圆形,隆起,
- v9 v1 N6 L7 h* I( y9 |" v# Z" t不透明,米粒状突起,# i) f% u5 Y( Z0 {' B
D. j2 b& [' _: O- w) V' W
+ ]; h: w6 b! F$ ?7 j光滑,有光泽
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) ]. X2 C/ F3 P' i6 b光滑,有光泽$ a5 `) m1 Q% t2 V1 @9 P
较湿润
# c7 S" _6 S& k6 X9 s; ^( _" Z: L: k4 n: T( i/ m
菌体形态) j; J7 W/ w: p
短杆9 H$ Q, x7 R! {$ z+ B
球形
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丝状) D* Z/ c* Y0 Y$ O4 [
# C1 o* b, S+ m9 z# ^菌体大小/μm
, t( j H7 c2 O- v( {(0.3-0.8)×(0.6-1.0)* F" B1 U: W( e/ Q. @6 B
Φ0.3
6 x) v9 x4 d) z(0.5-0.8)×(1.3-5.0)7 H5 ~7 U$ y7 M% K) p
0.2×(6-60)
- H) ]& {9 g1 _8 ]; ^" [7 B5 ?) I% l3 K. |* ~4 X; q- D; q( d
革兰氏染色
" F s9 x( ] ?* j3 n% G4 M, U OG' P+ e! W5 Q2 ^4 g0 O9 O
G# X5 @3 F+ ~0 V- n, x7 \
G
: `5 I* D$ E' Q3 L2 y( s$ cG% Q- X. N4 f# ^4 i; T
) s' _5 S/ u8 p1 q0 e Y- J" c初步鉴定
1 X0 p. p& @, v% A' s4 M黄杆菌属* x! o4 Y S7 e$ @- j4 M
微球菌属
* @, `2 H3 f: t+ Z假单胞菌属: [" U, B' @5 @- f, z. E
酵母菌属
+ Q% B4 {% D/ f+ C6 {+ S4 g# v. G% D3 x2.2 生长条件正交试验 ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验 向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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3 结论 * s5 c. z5 F$ D) w
①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。 ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。 ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 4 r" K" N- a! Y6 e
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7 z8 H1 J4 h2 E, D }" ] 作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。! }* {0 T1 |) h$ ?4 W
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