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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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2 p$ @# @" p  n/ c- m3 Y; u  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03$ h& S! c* M  z1 A; r  o& C% c
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# n/ I, \2 z1 R: `  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03/ d- p4 B  j. R+ P1 z1 P% X
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
% y- `  ?2 E3 J/ o/ [  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus 9 D  m" W1 n% B0 G+ `+ G
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
% U5 ^$ s9 J1 e- p: P1 材料与方法
  ]7 F5 d1 d" v2 a7 L1 D1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。
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1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。
4 Z" o, z8 ]. L7 h2 结果分析
# W) d4 Y: h# W. V( O1 {, i. a) D2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 2 E' ]; s: l# e! g8 ?, _
表3  4株机油降解菌形态特征
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# p  z. Z  G6 k) v, |: q菌落颜色# H* o9 m6 z; E+ j% b4 ^7 [: b
粉红
- b  b+ u! W$ o5 a, n淡黄. h4 Y% A6 n+ P* H; V1 b# z
淡黄# u2 `  L' n6 _# M, O+ C4 Z: Q
粉红7 s8 T  A8 c% i2 s2 K
$ S- x' ]6 O6 c% S, `4 G9 p
菌落形态' L: z5 ]) c& W3 E3 x8 z- A
不透明,微隆起,全缘,! K+ d# o( J  l7 z4 J
半透明,圆形5 ]4 \. ]) o  x/ f$ B' x
半透明,圆形,隆起,
* R* q* g; }% A# m$ }$ m9 ^/ }不透明,米粒状突起,5 D/ E% S4 }' w) x8 G
1 q; l; W- P$ E4 r
 
/ |4 G% v% u/ J. ?光滑,有光泽! w7 S8 }- ]  P
光滑,较干燥
: h8 {, Z% P9 t( f3 |$ N! h光滑,有光泽
, N3 u- ?4 N) a2 P6 X较湿润# g4 ]* `* |# N9 r% q. }
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菌体形态
. i8 t6 Z+ K" _- e: n短杆; N6 P( v5 ?$ x( w
球形' P0 X2 ^" [* C" [! t" P1 L' F6 @& X
杆状
8 |; h7 D  w- @: M( K; i丝状
" d9 G. n. B/ q
- |1 d! J7 u3 G) c: P: k菌体大小/μm+ Y3 w* N) z/ n( O
(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
* a; |+ @4 y6 i# d5 [Φ0.3% ~, ~$ v, }* K- E( g: {
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)- U5 O; ?1 q, X
0.2×(6-60)! g; Q6 H* p: C2 T
4 @8 z  U3 P) L
革兰氏染色6 I5 m" Y# @$ T. J7 N* y' e
G
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初步鉴定/ X: F1 i, |* Q' e: J: q
黄杆菌属
6 a  {( C& h5 ^: o9 x% p$ a微球菌属
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酵母菌属) ^$ D, U+ v0 G) F
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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