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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03: o) X/ h7 a* ]3 p# b! ^4 n
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) ( q7 a# e& w8 ]/ l1 E
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus   U& A/ I4 S1 K7 D% p. |0 A0 `
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 % F4 W9 s: l6 G
1 材料与方法 4 E& z3 Q' n! C- q% R6 I; f
1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 ; J2 J6 v2 o5 n# H2 T
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 4 i4 ~& C$ u0 L

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表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果 4 |2 G# e! j; [" G8 p) U
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25
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 ! _% D. w% d2 x- l5 p
1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 4 N/ M8 H7 \& E6 `
2 结果分析
- @- b4 J/ M, ~' J  p/ a) u2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 6 T; _$ V# H: C
表3  4株机油降解菌形态特征 - L; y# @" u. U: f' s$ }

# L& E$ @, x: F  T( \# H$ m/ ~$ M  g3 h0 q1 d0 v- e- X( M

" I9 R/ |; ?% {# J& ]/ V/ K( I7 `$ X2 H0 w/ s7 m: @& ]9 f! n
形态特征1 a' H/ G& M; H
ZL1, ?9 i$ I  w4 {* S
ZL2
3 {, m/ k  j# {# U) nZL3
) I: u' e* q: \* ~ZL4: H% D7 Q6 J/ J, s

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粉红2 w6 O5 _. v# O7 G
淡黄
' C( A- Z- x" \0 m5 m( |4 |: l淡黄
) u2 \, s: j2 `9 q: r粉红
2 a2 N/ ]2 {. E3 @" `; i
5 n! B! c) j7 J, M6 v# n7 f菌落形态
9 g* m2 Q7 O7 D( d不透明,微隆起,全缘,* [4 w% }, o- p6 P+ L% s& W8 s
半透明,圆形
' ]5 L$ G" J& W! G" v( H. [( L, ]半透明,圆形,隆起,1 r* W1 G/ c/ m+ I, H
不透明,米粒状突起,% y- q$ }5 u3 t& d1 E! \
( }0 Z- I* U/ T, |, |/ j4 P
 
1 W' J) k; F% ~' s4 A  {1 S光滑,有光泽& }# R2 X8 X0 E4 Y
光滑,较干燥
! p- I$ I! A0 A0 h光滑,有光泽* _, q5 ~" X4 `) Y
较湿润
. z# ]5 l8 Q8 v( ~; ]3 |2 f0 N5 b) x
2 H% i/ [9 W  k4 `5 ^1 _菌体形态
. l( g( Y  x6 n' J短杆
5 U9 y, `* N3 U( ^3 C' A7 f- z球形4 o# X  J) a" t# E5 E
杆状4 w3 S; b) V* _9 ]. ?
丝状
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菌体大小/μm
" s4 V8 _/ X4 b' J: T% f/ |6 I(0.3-0.8)×(0.6-1.0)  L: J9 Q- T: n- T" D
Φ0.3
  q: i7 H! v( L(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
  w9 q9 z5 |6 q* k6 B9 q0.2×(6-60)
' m6 V6 `8 T8 e) f+ k1 y
# L! F- T$ H6 q6 x7 _革兰氏染色
( R+ o$ I' ^* BG
  }! D2 q1 g2 n$ SG
: U( w( t4 H' h7 f, o3 eG3 Y- ?" r# N. P$ \5 ]
G
- h9 A8 q' w1 Z& B5 p5 T" m1 F5 m4 x0 h" G: |! ~
初步鉴定  x9 c# r4 \8 N2 k3 x: f
黄杆菌属
: L& |# I4 l: j  g" k微球菌属  y4 g6 U. \, e  q# U7 G
假单胞菌属
* k- e- d% n( G* \  b$ Q# c9 s; R酵母菌属0 f! u' T. J% e
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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9 W7 X- c, a1 R5 `, T3 结论
) q7 M8 [; m, C1 J  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。( [: A  l6 ~: j+ t) Q' O1 {

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