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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!

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! y+ _* [; L$ Y- X  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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* J) m3 h2 @: Q! m: r  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-035 q6 Y2 l/ o  c6 y+ L  H
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) ( B  B* \( O  V/ L2 I: T0 {
  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
% n4 i: [  q" V! c* H" A  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
4 F2 I: P' q( f' \* i1 材料与方法
4 `; x/ j/ h! H, n! X* l1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。
" |& w  _  h2 a# E) ^2 X表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果
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3 E8 u% J) a. b. @. e, c4 V( N! h- k! ?- b) R+ n' W+ b

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表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果
& m/ K' [2 z0 f2 Z: n& r, i. c- I/ c0 y8 U! }, Z. Q; D" @! K

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分组号9 {( y6 i- F1 C7 r
因素1 v0 Y3 W& B) n1 B
测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
" O& {% Z  \. ]1 S, G/ U降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
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# [+ V2 L0 z3 O( ~5 Z1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 ( E; ?) v0 J" i( B0 i2 B
2 结果分析 6 k' M+ L9 s3 ~8 ~/ X: t
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
4 i- \: R# I5 J' L. L表3  4株机油降解菌形态特征
7 z3 I& v! ?0 V2 x9 C% C! Q- Z% O
, Z4 Z5 D4 S! |' Q# i; J3 R9 g
  [# r  e  \# j' B; j
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菌落颜色8 v) [, \$ x5 B6 [6 w* n
粉红
  @& {  @* s/ o$ E淡黄
+ y; |4 f! }/ H* E! {- g. o0 o淡黄
: s, k8 C- n  [" M粉红" h1 a) S& v4 f( K$ [
, {- }' {7 G6 C
菌落形态
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8 `4 F7 }: s9 J& F& n半透明,圆形,隆起,$ \- _" l  Z7 o' Z: s. Z' l
不透明,米粒状突起,
6 C6 H* `; M) H/ t3 y- ?3 x* z/ F( }7 [: R" e% S2 h! Z
 0 W$ f8 s$ [7 s3 x) p
光滑,有光泽
) u5 X/ Q" h5 s. w0 D光滑,较干燥
! s9 y3 L4 X$ l* M& k光滑,有光泽7 K: z. _: i6 W. d' n- l
较湿润
' Q% N+ O. L: M9 E' Y8 ^9 A/ `1 t& x. g
菌体形态
8 U6 w6 K8 k* E) ]短杆
! R, O% M9 I3 A0 o9 j+ c- x+ k球形# K9 ]+ Q$ H* P3 ]% ^$ d
杆状
7 p" O$ B" N4 A8 Q  U丝状
$ T+ |8 Q1 M, D6 v' ^
. z4 q$ m7 ~& G菌体大小/μm5 A) B- W0 H0 ]; P' k
(0.3-0.8)×(0.6-1.0); \3 K4 T, a) b" n/ U' q
Φ0.31 M) Y1 f' H, r2 o4 _
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)$ r, h7 ^# m5 I+ P$ f: r, [
0.2×(6-60)7 [( ]2 Y- b1 Z) F1 _: P( J- F  t

$ t" F5 S% x. H; G* u$ d5 v$ j  u革兰氏染色6 @0 F/ o, Z; `7 e1 Y7 _3 R- f. M/ E' m7 C
G+ W$ I7 c* Z. p* Q4 C: p9 @& h  |+ ]
G
& t) a& m0 v5 Y  d  _' RG
4 @1 V+ Q+ _$ A- O+ aG, {' ^% L3 P3 r/ |
9 T: G  P# z$ \; q" P5 g, V
初步鉴定+ I8 i0 @& n* H4 U4 N' \6 J
黄杆菌属: j- ^: k6 r# X" o* J9 l
微球菌属/ q# F+ p, S1 N' d; c# j% J
假单胞菌属, j/ g# x+ y% |' u+ R* W: o
酵母菌属
6 ?8 w. N' E' L2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 / H8 K3 \6 r5 i0 h
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3 结论 2 |+ e* K/ |8 f3 l4 a9 b8 R
  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 & U+ C& t2 [: @  V
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6 T. W! i1 d# T' g  {  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。  ~9 r1 Y. P2 }) t

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