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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!

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6 O3 K3 ]) z% u* }9 U4 e  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03% {  q: M, A$ {# j+ E% }! Z1 o
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
7 E  k+ M5 o2 p$ c+ l( h  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus $ u6 G; F' u/ I( x' {0 h
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。 7 \- J" {8 }. D9 X. F
1 材料与方法
; f9 g! @/ F, V( O4 X' i1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 4 m1 v9 N' r( H1 _
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 ( E$ g( F/ K$ C) J3 k( e
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' ^! M+ M+ Q( k1 a# r0 m+ j( ^, ?% c1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 % @3 ?& V6 h0 r( h
2 结果分析 : c% J( Q. r3 U) q; Q% [# G
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 ' B; Y* m' I+ w/ V* h* b/ C
表3  4株机油降解菌形态特征 6 K$ i! M) ]7 C. m+ I9 T* H

4 N( L! s* j: R7 f( e+ P
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形态特征
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淡黄
6 O! Q7 X" e4 y( H6 C淡黄1 l" h. |6 a6 p, U0 U
粉红
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菌落形态# J% E  C/ X* G
不透明,微隆起,全缘,, ]6 p4 A% W( @/ {/ X* g* Z
半透明,圆形
( F8 Y0 P! u. M( ^半透明,圆形,隆起,
: v2 T; ^" X, p$ E. J2 X8 g不透明,米粒状突起,# d; Z% i4 K% S3 T/ o8 c1 ]

/ K1 i2 S5 f, D & J! r5 t8 H) K* v! X/ w- N
光滑,有光泽
. H9 B( v* `9 S光滑,较干燥+ G6 p' V9 n- V2 f7 ?9 {/ N
光滑,有光泽
+ S; r( x+ H' {6 t/ I' W9 _* x较湿润
; N7 h6 I! r+ X) _
3 I2 t6 I0 s1 H5 ~: |菌体形态# F% I; t2 p* O% T' |' y+ R
短杆( q; L, Q: I2 ?
球形
& B: Q2 o& s$ k+ i" w2 K5 `杆状; M+ t* w4 e+ W9 U/ `/ }- i
丝状7 X. k% t6 Y: W9 ^1 c
, v* x4 \# _+ k3 m6 N" t. P0 @9 H
菌体大小/μm
0 L3 G* T6 ^+ J1 x, _% g(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
- o) G5 ^% ?! O& p' {Φ0.3
. @+ i0 e& z3 D2 M2 Y; P(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
0 ?4 F- A/ f" f9 T9 X0.2×(6-60)
" k. K1 P5 C% L4 \! n9 T: u+ m5 [4 {3 x6 t+ T% @
革兰氏染色
8 N% L6 i! @1 U( d8 k$ A, I: BG
6 X* }& z$ j4 T$ V, {: lG
& L( G7 D# {8 |+ S8 M+ c% CG% a  Q% f+ |4 `- V! y; d$ Y: Z, |+ m5 H  K
G
! P; C3 ?$ A5 t6 O
8 U) C' ^0 b" D2 b* e  I2 @初步鉴定
: f$ i5 x; q4 m" p( d1 M" _黄杆菌属
0 d7 [! t1 K* G. f微球菌属% f+ ^, }+ S- n( H$ s1 Y
假单胞菌属' k' @7 U" K: ?: ?* b# X
酵母菌属
6 B6 M/ T+ _" E' y2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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3 结论
# y( r  l" j: e' W" r+ \6 V+ d2 |; q+ f  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 8 u6 a# ]4 L4 R' q2 ]: N
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  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。) @/ p1 E  }/ R9 U- m' n4 |

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