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/ y, P, n) Y6 }- p# V. h! ?8 A 中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
+ F5 \1 w- n' c% l) mAn Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, X......( q3 j* X# ~% \: \" p
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中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-030 o) c" ^, X! ?0 s. B/ j6 L7 n0 }. |
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) Z4 b/ ?! V- b
Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1. Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus [( M) Z1 Q+ \- b" X1 m
近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
) S& v: T! g! L( I4 P$ P1 材料与方法 & I. A* j6 a; ?+ q. a6 A; g
1.1 土壤样品 某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基 本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下: 1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。 2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L. 含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养 称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离 制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验 在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。
3 j+ g- ]3 |. Z0 }! o; F表1 ZL1菌株正交试验方案及试验结果
* l+ t& d* k/ V& n8 ^2 F5 F
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因素
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8 e5 D/ u, ?/ |; B" a# W' u降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
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232, N( K8 I% u# v
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7.00 U6 n- q; g5 R$ H
416
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3
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9 D( h; `5 y- z$ ^) O9.01 R0 g' D/ }8 E* `1 U, q/ u
6300 F/ ~! t1 B' Y+ Z/ l. p3 X4 R9 w
194
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2 y- S% `) a' M- Z" W424
. _1 S( a0 W9 h+ ~3 K" H, ~8 `7.00 ?! ]7 c2 U2 S8 L& Y
220; l+ H- n* t. \& B
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9.0
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5.0
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2 \2 Q! S7 h3 G. w165
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+ q2 `( I4 E$ r& \, A
R
3 Z1 k1 w; h& v1 ]3 S. H128+ P5 _: [2 s; M: ^% H0 i) ~: k
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5 l3 t. l$ E+ q 3 ?( w6 }8 K' b6 i5 z5 W( i8 s8 b3 D
表2 ZL2菌株正交试验方案及试验结果
' o6 [2 X B# T3 x5 X7 q* K( Y/ I8 }) |+ p8 W
5 E/ D5 v3 |/ s
4 N2 Y8 _. W8 M4 |7 I- @+ b- N4 c4 R
分组号
# g& B9 ]3 l* I因素
2 C1 J. ~: d3 p! O: M$ |1 Y测定结果ρ(油)/(mg.L-1)- q9 T" F B( V& d1 O
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
2 z4 i; y/ |8 l3 G
+ l' B) _( |& f p3 W3 ?温度/
8 v7 f% |. E2 h& b4 i9 H/ `ρ(油)/(mg.L-1)
& F' B% v2 \2 u m8 y( L0 bpH值
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1- Q& H" Q1 @8 W$ e, g; ~, b
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5742 T3 u5 v8 Z" Z4 G- h9 j- q) o
6.0
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) B; V8 a( X2 y& [307
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8 p5 H X* c, ]# M8.0. h6 l$ r+ o0 r5 L% F ?$ D3 u
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6.0$ Y. ^& D: p; `; @' I
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9 f. X3 @3 p2 G1 H, Q9 H% O" _574( l8 ^5 V2 H& L d% _* n. F
8.0
+ d/ ~$ U6 T7 a& x" N& J2965 _! N! r( ^2 x% u4 z) x
278
+ N3 O1 o' v5 p
5 g B9 _( D: | M* E' H7 \) n, H* V6
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6 T$ R" u" t5 G; [9 J' R% T0 f462, K1 Y0 H4 z3 J" t8 k2 S
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( C* M; H' n) O* {0 B) E
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2752 p$ z3 ?* ^) T( d4 P* c
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271; F6 [; L1 Y) @- g T4 E
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) X$ f# p, }. a. k' i- j% T16
- I3 v# R y+ |" v25* |1 m( t# D9 ]- A0 ~* Z1 u9 f. b
9 H% i- ?. V# u+ u) W& v
9 r* Y% ~! O8 ~2 D1.5 降解能力试验 配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法 用紫外介光光度法测定。
6 }5 O6 \3 z- O0 ^ A2 结果分析
# J9 l& m5 t, k, o+ X2.1 优势菌筛分试验 富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
" }; M; c/ ~; Y6 |) K表3 4株机油降解菌形态特征
5 z2 i r6 o. i+ R3 {: ^5 C$ y
( D& x* E0 c" u0 o: V {( L+ {2 Q7 w9 Q. q
4 `& @* j9 P* H g T" g& l( ], Q% x
2 H# U# m+ c2 N7 G, A
形态特征: v. w7 U& a6 P& }- d
ZL1
: C* s6 F7 E' @$ n0 L1 VZL2
( T V4 E# u% m/ I0 k5 B7 |( ]5 JZL39 M* i+ {9 K0 R: @
ZL4
2 ^; [+ Z- O( L4 m+ L8 i; H: R" Q# D& V) I
菌落颜色8 M' y' @1 I) J. m
粉红' R# k3 R3 z; q7 a
淡黄
: n" J& t5 N+ R+ A淡黄# ^# b' L9 v) l! [; `6 {- ~* F8 y" v% \
粉红
) N3 j' i% w: j" s7 j) Z8 q; H* C+ U" {. s6 t
菌落形态
1 {5 @6 X; R. f f" E$ P! R4 b不透明,微隆起,全缘," A. \1 R( G2 z3 L
半透明,圆形) k6 F* u' `/ @: v0 B
半透明,圆形,隆起,7 J9 B4 ]0 x: R" X4 z
不透明,米粒状突起,
2 J% C- ^" u5 }4 S
- I; M* b8 q$ T1 t , d" o: [! a: Y* l& U7 }) g+ ~/ X$ W
光滑,有光泽* j+ H* d, u5 l$ ^
光滑,较干燥
: ^6 G/ w2 T7 z8 `: {7 \- x% s光滑,有光泽
( P' ?2 b2 I2 a1 _: D; {较湿润
' D; ?. s4 `; ?3 R! L: u
+ |' U6 U F! d) N菌体形态
" b/ a0 C2 A |短杆
; H) q7 t2 I. X, K9 [$ c& j球形
. }3 X- B4 a( z$ |4 N' q杆状
! w7 g0 H6 Z5 j+ Y9 G" u丝状
/ }+ `0 G" ?* _' U* [/ I5 u3 I
% f# H" a w- i菌体大小/μm
! a6 p9 H. a+ y( G7 x(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
7 n" Q+ b# t G/ U/ |Φ0.3
8 g, S2 J6 O( C$ s! J) O; N2 ^(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
* f5 o7 S6 i% I$ R5 }+ d/ r0.2×(6-60)/ ?( y$ q$ H0 G$ B- l. d1 ?1 n
5 _5 u) V [6 ~" _革兰氏染色 r- k0 v4 r7 q0 _# O5 r
G
, R7 B9 t X, U5 ~' K J+ D7 o% `% ]G
9 }3 f4 K' @, R8 g Y3 k( \) N( x- xG7 w% R( L; S$ p. J
G. p* p8 h6 a% O( H& g6 S: ^
+ H3 A- m2 z' d9 ~* |3 c
初步鉴定
4 X: p4 p5 D& b; O! S t黄杆菌属4 p) O& Q# X5 t
微球菌属! n; c. s( K4 q2 u- r4 G. S1 T
假单胞菌属
2 d% a1 \6 O( Y( E酵母菌属
/ b" D9 K' m: b2.2 生长条件正交试验 ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验 向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 : n* O! ]2 e5 ~% m9 u( C
; g1 J1 {, h& N5 ?$ Q& o3 ]3 结论 3 R4 R- o+ z W- I. M6 c
①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。 ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。 ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 : R9 O9 Q4 V' _2 Z% ]! u
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# Z! p7 g1 ~$ i+ p2 K% H 作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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