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中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
1 }0 m* c6 h6 F1 F eAn Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, X......* A4 e; h. l4 P& ~' |, U
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中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-03# v0 x$ D& P! i* f7 [
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) & Q4 U+ v% z2 t/ s3 o0 C; b' R
Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1. Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus
! p( |5 `" n: D+ ]0 u8 i+ A+ Z+ P' u1 q 近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
# |; k/ p. ]% `1 材料与方法
3 m5 y/ J5 M/ d) T6 o1.1 土壤样品 某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基 本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下: 1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。 2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L. 含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养 称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离 制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验 在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 D* G, K# r% @: Q: e" W6 T4 L
表1 ZL1菌株正交试验方案及试验结果 4 U& \# ]7 d [
. l; f1 B" y: x2 \6 D/ g9 }
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测定结果ρ(油)/(mg.L-1)9 o+ D. w3 W- x8 m; c) S
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144, R0 h# N, }: x% [
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8 p" O2 P! a8 M& m
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7 Y/ t, A/ p/ g" p9 a128
5 X1 D. B9 v4 `& X# q" z443 y N' ]3 Y5 f
14
& A4 E7 n U3 [ 0 x/ i3 D, _' M* _
/ A( R" D; E+ z6 u0 d1 M
表2 ZL2菌株正交试验方案及试验结果
6 a( T# {7 F3 r! u% F- p. R [2 J% p: T. N& u& M+ N
2 B3 K' y! L# F4 t1 B. J8 i9 |4 g8 z F ]9 C) [5 Q! e
* L$ ^1 }) V7 [1 [
分组号" Y1 r9 e9 y' p7 t
因素; [ Q) |. L) N" m% t
测定结果ρ(油)/(mg.L-1) t* d7 y* N7 J: {& u E7 Y. k
降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
0 [3 ]( g, ?+ Z3 s
/ a4 ~, N q2 M& P- B温度/
# E [8 D" o2 `; Qρ(油)/(mg.L-1)
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6 a; [6 m g8 M1 k& t1# O! y" n$ D- b0 [
25
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8.0
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2 Q( z& i9 X3 G* A Y! ~4 m& t288
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4
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299
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271
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$ W$ m5 J6 a& `7 U/ ~1 X& b
" G& C$ N$ f. F! C/ H* p
1.5 降解能力试验 配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法 用紫外介光光度法测定。 4 i5 |+ @- h3 i0 c# a1 u7 `) m
2 结果分析
. z/ c5 k# I$ K& a3 G+ K2.1 优势菌筛分试验 富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 , S4 r4 @4 f$ c# {+ v) f
表3 4株机油降解菌形态特征
+ l; ?# p+ T/ n% S2 Z. ]3 Y5 O1 u/ q0 \/ V4 Q+ f
" ~/ ^: Y6 I$ h: `2 o6 I/ u
# Z N- {: l* e/ a( c
8 A/ J+ Z. k4 b9 K ]& Q形态特征8 m/ f/ J6 q. e( z8 @) m0 ~
ZL1
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ZL3- P( D) }3 M$ T' c% R& w0 P
ZL4
3 b3 ~" K# M/ K3 I2 E9 a: h& q
# y. r, S& D8 R) F. I+ V菌落颜色1 `) `0 t+ ^/ h5 ^1 Z5 p
粉红0 }1 m! X$ i1 e! J* h6 |& y& i# q# m
淡黄2 r8 O) y) v# d- B6 T
淡黄+ n# q+ p' L+ q0 ^# b
粉红( A. [ J7 e/ A, I) Q
- p% O# c9 E s$ t0 O
菌落形态
' Z8 r! d X: Z" R! u不透明,微隆起,全缘,
$ C7 B) {0 i0 N6 [半透明,圆形
2 P% j8 C7 h) M B: k+ \半透明,圆形,隆起,
4 J2 V; a" H, t9 ~0 |9 t6 D不透明,米粒状突起,
c. w% D# c) H5 U' T; S3 M
1 f4 g6 j6 d7 P X- d 0 G4 A" s# s5 r4 |' R* \8 W
光滑,有光泽
) c2 S9 E1 Z( u5 M- O光滑,较干燥 K9 A9 G/ P- ` q+ J
光滑,有光泽: _6 i" a) d3 T* k! L8 L( J
较湿润
, b% s6 C5 h! j `
% ~7 j9 n' ?% l% }5 [% c" T菌体形态; q! ^* p; k1 _4 P
短杆9 b6 B4 S( ?& n: o. \* G
球形1 t; F; B) s9 p% k J8 I9 U+ f
杆状
# l/ k, k) f# a+ X4 g丝状, J2 l8 d, A" h7 C4 b6 g
5 ? \: c3 W) N" ~( @7 K
菌体大小/μm
3 r2 f! a! a9 h4 F" |7 D% ]' V(0.3-0.8)×(0.6-1.0) y% l* ?/ K( N
Φ0.3
% P/ J2 t" Y5 C(0.5-0.8)×(1.3-5.0)+ w+ l( P; I8 _/ S
0.2×(6-60)9 a+ p! M) E* e
( H k0 W) [& q
革兰氏染色
4 I; C/ @; Y+ U2 e9 _G
z6 @" m# d: M" A! L2 ]G3 _* F C6 I( j! {) @6 l. _7 t) G
G
# r( t, T" t( E8 ~- c- aG
$ E. V/ Q# r; G7 k; G0 \4 X9 x
* g4 R: b2 m% N1 D4 E初步鉴定* r: [. z. q7 h R$ Y9 G
黄杆菌属
" z% X/ i/ Z9 ~, s微球菌属* O) A P: R3 M: U; k
假单胞菌属( [; |6 T7 {9 b- v: q
酵母菌属; \& f7 F# L$ ~+ @; m
2.2 生长条件正交试验 ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验 向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 ) r/ N/ l: ~6 N5 u& s
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3 结论 / |2 p I& Y( M1 \+ o& i
①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。 ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。 ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。. i) z+ A1 o/ p$ k. s# x9 {" ]
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