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) @+ l; A- N" j+ H7 p, v 中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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中图分类号:X703 文献标识码:A 文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
, b6 i c2 @& t( {8 z- Z2 FAn Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China) 4 K, a; c5 K* K, v4 C" e3 N
Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1. Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus . X/ n- y5 V) k$ \! X
近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
$ }; T$ l) [' S: X, a: O1 材料与方法 ) H L. f; u; [$ Q* b
1.1 土壤样品 某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基 本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下: 1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。 2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L. 含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养 称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离 制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验 在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。
6 E$ S( q' J# g4 C0 D表1 ZL1菌株正交试验方案及试验结果 . I0 R0 \6 B: F7 [6 t
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表2 ZL2菌株正交试验方案及试验结果 9 m" c9 b9 n' G9 k* s2 X. @: T# e6 u
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分组号
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9 L, `' E6 R0 \: m- F3 f0 _6 z255 Q, I' h! e5 ^( n, o' @
( w) P" C$ ^% C3 l/ V% D8 b ( _ A Q x3 {$ R+ H# n$ W
1.5 降解能力试验 配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法 用紫外介光光度法测定。
2 ?" J. i" F6 K* ~3 ~ N2 结果分析
! {2 Z) n% g2 a4 i, v2.1 优势菌筛分试验 富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。
" H- f! T0 u- M, G5 d. ]4 K2 W表3 4株机油降解菌形态特征
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* y4 v2 Q6 U. J5 e菌落颜色+ h. H& b. {" ?2 D& S7 m3 r$ a( i
粉红
$ |; N( `; _+ d7 J) T7 Z; i淡黄
8 d. q5 l# S# D. Z0 G. k' D淡黄
# n: X+ R- z+ i粉红
' M" x* `* D) t. G; |* o: A6 F
+ G- ?4 n! S4 d菌落形态
4 F: C3 U9 E. ^不透明,微隆起,全缘,& ~$ b5 {+ g% h; e( x' @* b) o4 V
半透明,圆形
3 Y, o7 d' B% Q+ b1 y2 ~3 R8 |6 z半透明,圆形,隆起,3 j$ {: U" i. Z/ l; e! l' u
不透明,米粒状突起,3 t& K4 N3 }4 [
. ?0 }4 t& G) t* t. E
0 v9 m: [, d* A' x: Z2 C光滑,有光泽( R/ W7 ]' T+ r4 @/ a
光滑,较干燥" @ @4 `$ S1 c. j8 n6 J
光滑,有光泽. W- N3 Z' Y: }
较湿润+ |) r o1 _* h4 k4 E
- i' y0 t' n% J3 y) T! [6 T) {! \菌体形态
! Z' U: o( b0 d+ `( D# E* m$ Z短杆
" z) ]: l) p: |) {! c7 x9 N3 u' ]球形
+ f( n& R" Y- r% A! q; J3 |+ ?杆状
1 ?5 E) ~" o1 E" w. {" b丝状) c- V; T x2 h
& z; {( H9 ]2 k
菌体大小/μm
- |4 U- A7 K, U0 d(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
+ ^5 Z7 e* I$ Q# T( y) WΦ0.34 O$ T* r/ c% f4 T
(0.5-0.8)×(1.3-5.0)- Y# _6 Z, o# L8 J0 }
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革兰氏染色
% h, s' A% B) l( `& _# ]- mG
) e% e+ [! E2 `9 U4 Z$ p+ \3 xG8 P9 S6 d4 c( B5 ~1 i0 |2 u& n
G
6 D3 b6 S/ y4 R, UG
0 D" O! w2 R0 Q" a. D
" x" F5 U, p" Y5 {0 f+ k ^7 U: l7 L3 L初步鉴定
- I& z" o- J& T4 d5 w, |1 z黄杆菌属
9 n& H3 J0 H! Q8 e) F3 d$ [微球菌属+ L. Y+ b# x( d; r9 L
假单胞菌属
$ Q6 S0 x1 Q, k5 l4 R酵母菌属% w9 x2 U4 ^# Z$ _/ Y
2.2 生长条件正交试验 ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验 向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。
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3 结论 8 E8 U& X, s4 ~- T
①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。 ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。 ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。
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作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。. r& H3 ~4 [, D2 H, m
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