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微生物处理机油污染废水研究

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发表于 2010-2-21 20:12 | 显示全部楼层 |阅读模式
老杨团队,追求完美;客户至上,服务到位!
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  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03
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, Q5 R9 _1 X* ]" g& U  中图分类号:X703   文献标识码:A   文章编号:1009-2455(200)06-0032-03; W! }# O: I% M
An Experimental Study on Microbiological Treatment of Lubricating Oil-Contaminated WaterLlU Qin-ya, ZHOU Hai-dong(College of Environmental and Spatial Informatics, China University of Mining and Technology, Xuzhou 221008, China)
' c$ @2 l) z! ~' e  Abstract: Two strains of high-effective, lubricating oil degrading bacteria, ZL1 and ZL2, were screened out from oil-contaminated soil, which were preliminarily identified as flavobacteriun and tnicrococcus. The effects of temperature, oil content and pH value on their oil-degrading capacities were dletermined by orthogonal experiment of growth conditions. A degrading capacity experiment was carried out with an initial wastewater oil content of 270 mg/L. The experimental results showed that the oil removal rates by the strains ZL1 and ZL2 from the in-oculum in about 2 days were up to 67. 9% and 76. 2% respectively and the adaptation range of strain ZL2 to oil content and pH value was wider than that of ZL1.  Key Words: lubricating oil; oil-containing wastewater; wastewater treatment; microorganism; flavobacteri-un; micrococcus   p8 @0 R9 S6 v4 z. |$ a
  近年来,国内外对石油及兵产品的微生物降解研究常见报道,却鲜见机油废水微生物降解方面的研究。本试验目的是通过常规微生物驯化方法,以市售机油为唯一碳源,从油污土壤中分离筛选出机油高效降解菌株,并对其生长条件及降解特性进行研究,以期进一步应用于含油污水的治理。
; K! d; E3 C# e7 J( t1 材料与方法 6 u1 p, I* t- V: I$ f7 [" G' E3 _4 z  }
1.1 土壤样品  某石油库贮油罐附近的石油污染土壤,取样3份,按含油量由多至少编为1#,2#,3#。1.2 培养基  本试验选取两种无机基础培养基,(用蒸馏水配制并高压蒸气灭菌),编号分别为1#,2#,组成如下:  1#基础培养基:p(KH2PO4)=0.5g/L,ρ(K2HPO4)=0.5g/L,P(MgSO4·7H2O)=0.2g/L,ρ(NaCl)=0.2g/L,p(CaCl2)=0.1g/L,ρ(NH4NO3)=1.0g/L,MnSO4痕量,FeCl3痕量。  2#基础培养基:p(NaNO3)=2.0g/L,ρ(KH2O4)=0.2g/L,ρ(MgSO4.7H2O)=0.2g/L,ρ(酵母浸膏)=1.0g/L.  含油培养基是向上述无机基础培养基中加入适量机油。固体培养基中加入质量分数为0.2%的琼脂。1.3 优势菌筛分试验1.3.1 选择富集培养  称取土样各10g,加入到500mL1#含油培养基(含机油4mL)中,调pH值7.0,通气恒温30℃培养48h后,分别移取上述培养液5mL于45mL1#,2#含油培养基(含机油2mL)中,恒温30℃振荡培养。1.3.2 平板分离  制作1#,2#固体含油培养基平板苦干,用接种环蘸取振荡培养较好的菌液在相应平板划线,恒温30℃培养48h后平板划线分离,重复数次。选择生长状况良好的菌株进行平板扩大培养。1.4 生长条件正交试验  在保证供氧和氮、磷营养前提下,选择温度。油的质量浓度(以mg/L计)和pH值作为本次实验的三个因素进行三水平实验,方案见表1、表2。将平板培养48h的菌体刮下,5000r/min离心5min,分离得到湿菌体。向方案中每个样品加入0.5g湿菌体,培养60h后测定样品中油的质量浓度。 # @5 a; q7 K( |, ~! i
表1  ZL1菌株正交试验方案及试验结果 2 b! Z0 P" H6 `9 F1 y8 G5 [! `

* u. W7 @  X$ Z( A! C: @" D2 z& h+ R' f+ |

  g! e, @* R6 N. I5 Q- s& n$ z0 ^" S6 {2 \0 ?
分组号
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179
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44) Y( R5 K  W/ E
14
8 L' M1 j* a' V) Y" o  i 
/ M! Q( g! |9 k& m$ d6 ~1 Q   k4 b8 |9 M! v' X0 s
表2  ZL2菌株正交试验方案及试验结果
: W- V, ]1 M5 i; x0 E8 y+ S$ V- q9 m5 |
5 I) M1 X  T! [! s9 V5 O& g) F+ n

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分组号0 @  Z  }3 Q* T# g# B
因素
, ^; }8 v+ S( }! {' C) a! W测定结果ρ(油)/(mg.L-1)
$ k" |  z( n& U6 ]" ^4 m降解测量ρ(油)/(mg.L-1)
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ρ(油)/(mg.L-1)
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299
2 d$ y* {7 R5 n- h* c; _( }; I. o& Z4 F+ v
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5746 W+ l( p# {6 f1 g" ^, f
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264! n, o3 Y* I- ~# g! A6 @, i
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: a% {- O& u9 _, ]* `25. a& F' s7 v) I; Y
 
' U' D9 O9 `( e# G * S" T1 E  n3 k- X1 y
1.5 降解能力试验  配制机油质量浓度为270mg/L的含油培养基1L,投入小型间歇反应器中,加入离心分离得到的湿菌体5g,通气恒温30℃培养,间隔12h取样测定其含油量。1.6 测试方法  用紫外介光光度法测定。 0 b5 I% `& q2 d" R
2 结果分析 ' N: [* N0 a" g( k( W' W
2.1 优势菌筛分试验  富集培养过程中,1#土样的培养液出现的泡沫较多,乳化现象明显,菌液也较为粘稠,分离出较多的菌株,说明土壤中的石油烃能刺激石油降解菌的生长。经过选择富集培养、平板分离出4株以机油为唯一碳源的菌株,编号为ZL1,ZL2,ZL3,ZL4,性状见表3。进一步培养后筛选出降解性能较好的ZL1(1#培养基)和ZL2(2#培养基)进行正交试验和连续培养试验。 ; i9 t. D! Y) g1 P) P
表3  4株机油降解菌形态特征 . j$ D1 \3 a1 T! G( M: }, b5 L. i( T

. y% d0 e8 Z  R% b
( W$ D  S! \9 c$ a' w
# V5 [  P6 s" P7 U  j  B  Y# h. ^
形态特征
+ j- q& A' J! \/ H; Q* zZL1
8 h! I: F2 ~  z/ JZL2
( k" `& k. \4 j- T% A$ @0 UZL3
# E  C% `& V  _ZL4
* v  \, M9 _/ U2 g: Z( \4 Y7 m% k+ A* R3 u* E' f0 f
菌落颜色, C8 c3 t3 r& ^5 m1 L3 R) i+ v
粉红
9 j- o' `9 C* `/ `淡黄
+ q' d8 m4 B) _, c1 K. t. ]7 a淡黄
$ E% G* V4 g2 ^5 l粉红8 P2 g! ]/ h8 ]

) k/ K& Q$ e' P% Y菌落形态5 B6 Z1 |' q  {  A5 ~  X+ |2 T
不透明,微隆起,全缘,0 h+ ]2 u( c/ h+ X. U
半透明,圆形
6 |4 ?& w' T: B. A. B/ k# ~半透明,圆形,隆起,! v5 i) N# X- M# i, ~4 X2 X
不透明,米粒状突起,5 ?) P$ k; |2 P( i1 e
9 X( s: }1 g) M
 5 W# s+ B. L" ]
光滑,有光泽, l6 V2 j8 I8 J6 y" i% w; D
光滑,较干燥
. d0 D  ?4 a5 K" I  T光滑,有光泽3 l' ?1 O  U: k
较湿润( k& d2 d3 A# I" }# h2 I8 F

, h3 W! i! q: o2 U' R+ j, v. h( j菌体形态3 Y. ^; B, D1 M1 O
短杆* E8 A* w- E0 a7 T9 D, O+ B) F$ `
球形1 A7 R6 s% [" [
杆状
8 w. k1 G3 |; R6 C2 {4 I. f丝状0 b$ s. L- d$ Y% F# r, Z  i

! h6 ]/ m: c: X! |) J. d菌体大小/μm
2 h8 |6 N. V7 ^9 M9 e(0.3-0.8)×(0.6-1.0)
4 z3 D1 N1 x8 G. J" @- }9 dΦ0.3
3 ?: ~& r( m: }(0.5-0.8)×(1.3-5.0)
2 U$ _" a; ^. q0.2×(6-60), |4 O! o7 s2 h* N: J( D% ]
/ C+ C1 c( r2 f: s" a- z9 V, ^
革兰氏染色; `: n5 T9 N1 z" a2 ?7 Q" C
G
6 J4 i. o* d% i) `G
6 z7 ?3 `& _7 y' R' I) ^G
5 ]( T' }/ |6 DG$ k5 K0 x, B/ j5 x

- r% f4 u# [' C! T) f1 x1 M4 w0 C初步鉴定
: @8 V. G. W9 [; ]4 m9 n- `黄杆菌属
0 P/ b8 V9 U3 n$ K微球菌属
8 U+ Y% h$ x$ y8 N假单胞菌属' y0 f8 X7 `! F2 u1 A2 G2 c2 t8 r' @
酵母菌属% @4 M7 x- A' D6 J: ?, j9 g- s
2.2 生长条件正交试验  ZL1,ZL2菌株按设定的正交试验方案进行试验,测定其剩余含油量,以降解油量作为考察指标,计算结果见表2、表3。分析极差值R可以看出:ZL1菌的R温度为128,ZL2菌的R温度为73,均为最大极差值,说明温度是影响降解效果的主要因素。25℃ZL1菌降解机油能力较强;油质量浓度越低降解效果越好;pH值为7时,降解效果最好,说明ZL1菌适于在中性条件下生长。30℃ZL2菌降解机油能力较强;机油的质量浓度在368-767mg/L范围内对降解效果影响不大,以ρ(油)=574mg/L时降解效果最明显,还应进一步扩大试验的油含量范围以确定油含量对ZL2菌降解能力的影响;pH值在4-8范围内对降解效果的影响也不显著,其中PH值为6时降解效果最好,说明ZL2菌较适于在中性偏酸条件下生长。2.3 降解能力试验  向1L油质量浓度为270mg/L培养液中投加5g湿菌体进行间歇培养,考察ZLI,ZLZ菌的降解能力,结果见图1。由含油量与培养时间关系曲线可以看出:ZL1,ZL2菌被加人含油培养基后很快适应环境,随着培养时间的增长,含油量不断下降。ZL1菌在30h左右去除率达到最大,后含油量下降缓慢,到60h左右曲线趋于平直;ZL2菌在20h左右去除率达最大,48h左右曲线趋于平直。曲线说明ZL1,ZL2菌适应能力较强,ZL1菌在0-60h内生长旺盛对机油的去除率可达67.9%,ZL2菌在0-48h内生长旺盛,对机油的去除率高达76.2%,试验后期降解曲线趋于平直,含油量基本不再变化,可能是由于机油中的一些重组分难于降解的原因。 " Z1 A9 g$ y' C; G2 Z9 z+ s
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3 结论 , y9 d. C! h& G0 V0 |
  ①石油污染土壤较适于做高效石油降解菌驯化菌源。筛选到两株高效机油降解菌ZL1,ZL2。通过正交试验得出ZL1黄杆菌属适于在25℃,油的质量浓度在424mg/L左右,中性条件下生长。ZL2微球菌属适于在 30℃,油的质量浓度在574mg/L左右,中性偏酸条件下生长。  ②温度对ZL1,ZL2菌的机油降解能力影响较大。ZL2菌的PH值、机油浓度适应范围较广,有较好的应用前景。  ③ZL1,ZL2菌对初始机油质量浓度为270mg/L培养液的去除率分别达到67.9%和76.2%,混合菌株的降解效果有待进一步研究。 & m0 [' ^+ n" \, y

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3 n. h5 q5 A* `0 Y# t4 n  作者简介:刘勤亚(1977-),女,河北石家庄人,环境工程专业硕士在读。
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